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              如何制備流式細胞儀標本?

              發布時間:2017-11-21 14:41 | 編輯:流式細胞儀 | 138 次瀏覽
              活細胞表面保留有較完整的抗原或受體,先用特異性鼠源性單克隆抗體與細胞表面相應抗原結合,再用熒光標記的第二抗體結合,根據所測定的熒光強度和陽性百分率即可知相應抗原的密度和分布。這就是流式細胞儀標本制備的原理。流式細胞儀標本的制備具體步驟:1、收集細胞。上皮細胞需要蛋白酶消化,然后收集。加PBS或者流式洗液1ml,振蕩,1400rpm離心5min,棄上清。2、染表型懸浮細胞于100ul體積,細胞濃度約為或者小于1X10^6,加...

              活細胞表面保留有較完整的抗原或受體,先用特異性鼠源性單克隆抗體與細胞表面相應抗原結合,再用熒光標記的第二抗體結合,根據所測定的熒光強度和陽性百分率即可知相應抗原的密度和分布。這就是流式細胞儀標本制備的原理。

              流式細胞儀標本的制備具體步驟:

              1、收集細胞。上皮細胞需要蛋白酶消化,然后收集。加PBS或者流式洗液1ml,振蕩,1400rpm離心5min,棄上清。

              2、染表型懸浮細胞于100ul體積,細胞濃度約為或者小于1X10^6,加入流式染色抗體。按照說明書用量或者減半(根據經驗),分出一管作為同型。

              3、4℃,避光30min,用PBS洗一遍,1400rpm離心5min,棄上清。

              4、破膜破膜劑以BDpharmingen破膜劑為例,加300ul,4℃,避光30min以現配的破膜洗液1ml洗一遍。1400rpm離心5min,棄上清。

              5、胞內染色加入流式抗體4℃,避光30min。用破膜洗液1ml洗一遍,1400rpm離心5min,棄上清。

              6、加入200ul1~2%多聚甲醛4℃避光保存。一般情況下,可直接把抗體加入到棄上清后的殘留液里(體積大概為50ul左右)。

              流式細胞儀標本制備注意事項:

              1、整個操作在4℃下進行,洗滌液中加有比常規防腐劑量高10倍的NaNO3,上述實驗條件是防止一抗結合細胞膜抗原后發生交聯、脫落;

              2、洗滌要充分,以避免游離抗體封閉二抗與細胞膜上一抗相結合,出現假陰性;

              3、加適量正常兔血清可封閉某些細胞表面免疫球蛋白Fc受體,降低和防止非特異性染色。

              4、細胞活性要好,否則易發生非特異性熒光染色。

              以上就是流式細胞儀使用的相關事項,希望文章對大家有幫助!

              (聲明:文章來源于網絡,不代表本站觀點及立場,版權歸原作者所有,若有侵權或異議請聯系更正或刪除)

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